Поверхностные ансамбли на основе углеродных нанотрубок в пьезоэлектрическом иммуносенсоре для высокочувствительного определения рактопамина

С. С. Гражулене; Т. Н. Ермолаева; О. В. Фарафонова; Е. И. Шукшина

doi:10.17308/sorpchrom.2017.17/412

С. С. Гражулене главный научный сотрудник, д. х. н., Институт проблем технологии микроэлектроники и особочистых материалов РАН, Черниголовка
Т. Н. Ермолаева про- фессор кафедры химии, д.х.н., Липецкий го- сударственный технический университет, Липецк
О. В. Фарафонова до- цент кафедры химии, к.х.н., Липецкий госу- дарственный технический университет, Ли- пецк
Е. И. Шукшина аспирант кафедры химии, Липецкий государственный технический университет, Липецк.

DOI: https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2017.17/412

Ключевые слова: пьезоэлектрический иммуносенсор, поверхностные ансамбли, монокло- нальные антитела, рактопамин, многостенные углеродные нанотрубки.

Аннотация

Изучены условия формирования распознающего слоя пьезоэлектрического сенсора на основе углеродных нанотрубок для высокочувствительного определения рактопамина в прямом формате иммуноанализа. Показано, что предварительная обработка углеродных нанотрубок концентрированными азотной и серной кислотами, а также активация карбоксильных групп карбодиимидным методом обеспечивают их прочное связывание с аминогруппами подложки на основе 2-меркаптоэтиламина и аминогруппами моноклональных антител к рактопамину, применяемых в качестве распознающих элементов сенсора. Установлены концентрации коллоидных растворов двух видов углеродных нанотрубок в диметилформамиде, обеспечивающие максимальные значения концентрационной чувствительности пьезоэлектрического сенсора при определении рактопамина. Диапазон определяемых содержаний рактопамина с помощью пьезоэлектрического сенсора составляет (нг/см3 ) 0.09-25, предел обнаружения 0.03.

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Литература

1. Blanca J., Munoz P., Morgado M., Mendez N et al., Anal. Chim. Acta. 2005, Vol. 529, pp. 199-205.
2. Ermolaeva T.N., Kalmykova E.N., Uspekhi khimii, 2006, Vol. 75, No 5, pp. 445-459.
3. Khan M.Z.H., Harkin-Jones E., Cogent Engineering, 2016, Vol. 3, pp. 1-8. http://dx.doi.org/10.1080/23311916.2016.11700 97
4. Farafonova O.V., Shikhaliev Kh.S., Ermolaeva T.N., Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya, 2012, No 6, pp. 721.
5. Kalmykova E.N., Melikhova E.V., Eremin S.A., Ermolaeva T.N., Antibiotiki i khimioterapiya, 2004, Vol. 49, No 1, pp. 8.
6. Blanca J., Munoz P., Morgado M., Mendez N. et al., Anal. Chim. Acta., 2005, Vol. 529, pp. 199-205.
7. Elliott C.T., Thompson C.S., Arts C.J., Crooks S.R., Analyst, 1998, Vol. 123, pp 1103-1107.
8. Turberg M.E., Rodewald J.M., Coleman M.R., J. Chromatogr. Biomed. Appl., 1996, Vol. 675, No 2, pp. 279-285.
9. Wang J.P., Li X.W., Zhang W., Shen J.Z., Chromatographia, 2006, Vol. 64, pp. 613-617.
10. Belyakova N.V, Nechaeva L.S., Butyrskaya E.V., Shaposhnik V.A. et al., Sorbtsionnye i khromatograficheskie protsessy, 2016, Vol.
16, No 4, pp. 526-532.
11. Chen H., Huang J., Fam D.W.H., Tok A.I.Y., Bioengineering, 2016, Vol. 3, No 23, pp. 1-10. doi:10.3390/bioengineering3040023
12. Ermolaeva T.N., Voronezhtseva O.V., Sorbtsionnye i khromatograficheskie protsessy, 2011, Vol. 1, No 1, pp. 68-76.
13. Grazhulene S.S., Red'kin A.N., Telegin G.F., Zhurnal analiticheskoi khimii, 2012, Vol. 67, No 5, pp. 479-484.
14. Varlamova R.M., Medyantseva E.P., Khamidullina R.R., Budnikov G.K., Uchen. zap. Kazan. un-ta. Ser. Estestv. nauki., 2016, Vol.
158, kn. 3, pp. 351-368.
15. Palaniappana Al., Goha W.H., Yildiza U.H., Swarnalathab B. et al., Sensors and Actuators B,2012, Vol. 161, pp 689-696.
16. Ahammad A.J.S., Lee J-J., Rahman Md.A., Sensors, 2009, Vol. 9, pp 2289-2319. doi:10.3390/s90402289.
17. Gromov A., Dittmer S., Svensson J., Nerushev O. t al, J. Mater. Chem., 2005, Vol. 15, No 15, pp. 3334-3339.
18. Vasil'ev S.V., Popova M.V., Farafonova O.V., Karaseva N.A. et al., Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya, 2014, No 1, pp. 444.