Очистка хлорогеновых кислот методом твердофазной экстракции

V. I. Deineka; A. Y. Mikheev; E. Y. Oleinits; L. A. Deineka

doi:10.17308/sorpchrom.2018.18/556

V. I. Deineka Дейнека Виктор Иванович – профессор кафедры общей химии, д.х.н., Белгородский государственный национальный исследовательский университет, Белгород
A. Y. Mikheev Михеев Андрей Юрьевич – научный сотрудник, к.ф.-м.н., Институт теоретической и экспериментальной биофизики Российской академии наук, Пущино-на-Оке, Московская область
E. Y. Oleinits Олейниц Елена Юрьевна – магистрант кафедры общей химии, Белгородский государственный национальный исследовательский университет, Белгород
L. A. Deineka Дейнека Людмила Александровна – доцент кафедры общей химии, к.х.н., Белгородский государственный национальный исследовательский университет, Белгород

DOI: https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2018.18/556

Ключевые слова: твердофазная экстракция, хлорогеновые кислоты, обращенно-фазовая ВЭЖХ, растворитель пробы, артефакты в хроматографии.

Аннотация

Исследована возможность использования насадочных картриджей ДИАПАК С18 для очистки хлорогеновых кислот методом твердофазной экстракции. Показано, что особое внимание следует уделить сорбции 3-кофеоилхинной кислоты (3CQA), обладающей наименьшим удерживанием в условиях обращенно-фазовой хроматографии, а сорбцию необходимо проводить из подкисленных до рН 1 экстрактов. С учетом объема элюата, получаемого при десорбции, и последующего разбавления степень концентрирования 3CQA составит около 2.5, а для 5-кофеоилхинной и 4-кофеоилхинной кислот этот параметр может быть удвоен. Показано, что использование при пробоподготовке высоких концентраций метанола или ацетонитрила в качестве растворителей пробы может быть недопустимым из-за «выноса» части аналитов раньше основного пика.

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Литература

1 Upadhyay R., Rao L.J.M., Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2013, Vol. 53, pp. 968-984.
2. Gil M., Wianowska D., Annales Universitatis Mariae Curie-Sklodowska Lublin – Polonia. 2017, Vol. 72. S. AA, pp. 61-104.
3. Ky C.-L., Noirot M., Hamon S., J. Agric. Food Chem., 1997, Vol. 45, pp. 786-790.
4. Zhao W., Chen Y., Li S., Dai K. et al. African J. Biotechnol., 2015, Vol. 14, pp. 1731-1736.
5. Li Z., Wang L., Yang G., Shi H. et al., J. Chromat. Sci., 2003, Vol. 41, pp. 36-40.
6. Suárez B., Picinelli A., Mangas J.J., J. Chromat. A, 1996, Vol. 727, pp. 203-209.
7. Zhang X., Liu W., Xu Y., Yang L. et al., Chem. Res. Chinese Universities, 2011, Vol. 27, pp. 550-556.
8. Suárez-Quiroz M.L., Campos A.A., Alfaro G.V., González-Ríos O. et al., J. Food Composit. Anal., 2014, Vol. 33, pp. 55-58.
9. Temerdashev Z.A., Milevskaya V.V., Kiseleva N.V., Vernikovskaya N.A. et al., Analitika i kontrol, Analytics and Control, 2013, Vol. 17, pp. 211-218.
10. Shan Y., Jin X., Cheng Y., Yan W., Internat. J. Food Prop. 2017, Vol. 20, pp. 2028-2040.
11. Hanai T., Tran C., Hubert J., J. Sep. Sci., 1981, Vol. 4, pp 454-460.
12. Deineka V.I., Sidorov A.N., Deineka L.А., Tynyanaya I.I., Sorbtsionnye i khromatograficheskie protsessy, 2016, Vol. 16, pp. 384-389.