Растительные источники про-изводных пеларгонидина для идентификации антоцианов
DOI:
https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2025.25/13575Ключевые слова:
стандартные образцы, качественный анализ, производные пеларгонидина, плоды земляники, алые цветки тюльпанов, алые цветки роз.Аннотация
Возникающая в последнее время в связи с санкциями проблема стандартных веществ для качественного и количественного анализа может быть частично решена (для качественного определения) использованием экстрактов растительных материалов, состав которых мало или совсем не зависит от сорта и условий выращивания. Показано, что для надежного определения некоторых производных пеларгонидина в растительных экстрактах в лабораториях могут быть приготовлены экстракты плодов или цветков специально подобранных растений. В таком случае для идентификации соответствующих гликозидов пеларгонидина достаточно сравнить времена удерживания и электронные спектры поглощения антоцианов исследуемого соединения с экстрактом выбранного растительного материала. Так, на основании многолетних исследований, выполненных в НИУ БелГУ, для идентификации цианидин-3-глюкозида можно использовать экстракт плодов обычной, продаваемой на рынке земляники (которую в народе называют клубникой), состав которого рассмотрен в настоящей работе и содержит цианидин-3-глюкозид в качестве основного компонента (более 80% по площадям пиков). Альтернативный вариант – алые плоды барбариса, содержащие более 50% этого антоциана с добавками 3-глюкозидов цианидина и дельфинидина. Контроль растительного материала может быть осуществлен по электронным спектрам поглощения, отличающихся от антоцианов на основе остальных пяти агликонов (цианидина и пеонидина, дельфинидина, петунидина и мальвидина). Для идентификации пеларгонидин-3-рутинозида перспективным источником этого антоциана являются лепестки алых тюльпанов (не темно красных, коричневых или фиолетовых). Альтернатива – плоды достаточно популярной у садоводов–любителей войлочной вишни. Для идентификации пеларгонидин-3,5-диглюкозида может быть использована роза алой окраски или цветки пеларгонии такой же окраски. В работе приведены необходимые электронные спектры поглощения. Показано, что при внутренней нормировке желательно записывать пики на длине волны, соответствующей максимальной абсорбции. Но можно воспользоваться специальными поправочными коэффициенты, рассчитываемые по индивидуальным спектрам антоцианов. Сопоставлено удерживание производных пеларгонидина на нескольких марках стационарных фаз.
Скачивания
Библиографические ссылки
Lee J., Rennaker C., Wrolstad R.E. Food Chem. 2008; 110: 782-786. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.03.010
Lee J., Durst R.W., Wrolstad R.E. J. AOAC Intern. 2005; 88: 1269-1278. https://doi.org/10.1093/jaoac/88.5.1269
Rivas-Gonzalo J.C., Gutierrez Y., Hebrero E., Santos-Buelga C. Am. J. Enol. Vitic. 1992; 43: 210-214. https://doi.org/10.5344/ajev.1992.43.2.210
Deineka L.A., Sidorov A.N., Deineka V.I. Kul’chenko Ya.Yu., Blinova I.P., J. Anal. Chem. 2020; 75: 754-758. https://doi.org/10.1134/S1061934820060064
Deineka V.I., Oleinits E.Yu., Kul’chenko Ya.Yu., Blinova I.P., Deineka L.A. J. Anal. Chem. 2020; 75: 1443-1450. https://doi.org/10.1134/S1061934820090087
Deineka V.I., Oleinits E.Yu., Kulchenko Y.Yu., Blinova I.P., Deineka L.A. Russ. J. Phys. Chem. A. 2021; 95: 1729-1734. https://doi.org/10.1134/S0036024421080094
Dejneka L.A., Blinova I.P., Kul'chenko YA.I., Ozer P.S., Saenko I.I., Dejneka V.I. Uspekhi sovremennogo estestvoznaniya. 2016; 2: 16-20 (In Russ.)
ZHbanova E.V., Luk"yanchuk I.V., Pak N.A. Sovremennye nauchnye issledovaniya i innovacii. 2016; 3: 241-253 (in Russ.)
Karaaslan N.M., Yaman M. Intern. J. Food Prop. 2017; 20: S2313-S2322. https://doi.org/10.1080/10942912.2017.1368548
Bridle P., Garcia-Viguera C. Food Chem. 1997; 59: 299-304. https://doi.org/10.1016/S0308-8146(96)00176-8
Aaby K., Mazur S., Nes A., Skrede G. Food Chem. 2012; 132: 86-97. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.10.037
Comandini P., Blanda G., Cardinali A., Cerretani L., Bendini A., Caboni M. J. Sep. Sci. 2008; 31: 3257-3264. https://doi.org/10.1002/jssc.200800199
da Silva F.L., Escribano-Bailón M.T., Alonso J.P., Rivas-Gonzalo J.C., Santos-Buelga C. LWT - Food Sci. Technol. 2007; 40: 374-382. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2005.09.018
Tamura H., Takada M., Yoshida Y. Nyoho. Biosci. Biotechnol. Biochem. 1995; 59(6): 1157-1158. https://doi.org/10.1271/bbb.59.1157
Sorokopudov V.N., Hlebnikov V.A., Dejneka V.I. Himiya rastitel'nogo syr'ya. 2005; 4: 57-60. (IN Russ.)
Deineka, V.I., Deineka, L.A., Sele-menev, V.F., Chulkov, A.N., Kulchenko, Y.Y. VEZHKH. Sorbcionnye i hromatograficheskie processy. 2016.; 16: 464-471. (In Russ.)
Cao J., Jiang Q., Lin J., Li X., Sun C., Chen K. Food Chem. 2015; 173: 855-863. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.10.094
Deineka V.I., Deineka L.A., Saenko I.I. J. Anal. Methods Chem. 2015; 2015: ID 732918. https://doi.org/10.1155/2015/732918
Gardeli C., Varela K., Krokida E., Mallouchos A. Medicines. 2019; 6: 90. https://doi.org/10.3390/medicines6030090
Siriwoharn T., Wrolstad R.E., Finn C.E., Pereira C.BJ. Agric. Food Chem. 2004; 52: 8021-8030. https://doi.org/10.1021/jf048619y
