Влияние строения производных хинолина на их сорбцию на сверхсшитом полистироле
Аннотация
Статья посвящена изучению хроматографического поведения производных хинолина и тетрагидрохинолина. Цель работы заключалась в исследовании закономерностей сорбции этих соединений из водно-ацетонитрильных растворов на сверхсшитом полистироле методом обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии. Рассчитаны значения объема, поляризуемости, липофильности и дипольного момента молекул производных хинолина, которые существенно зависят от природы и положения функциональных групп и заместителей в основном ядре. Установлено, что появление функциональных групп и заместителей приводит к увеличению объема и поляризуемости молекул производных хинолина по сравнению с незамещенным хинолином и метилхинолином, а липофильность и дипольный момент при этом изменяются в зависимости от природы заместителя и его положения в основном фрагменте. Получены зависимости сорбционных характеристик от строения и физико-химических свойств сорбатов. Показано, что в соответствии с закономерностями обращенно-фазового варианта жидкостной хроматографии удерживание веществ изменяется симбатно изменению характеристик молекул, ответственных за дисперсионные взаимодействия. При этом присутствие в молекулах атомов галогенов, фенильных радикалов и других заместителей, способных к π-взаимодействиям с поверхностью сверхсшитого полистирола, приводит к значительному возрастанию удерживания, а наличие карбоксильной группы или карбоксиалкилов, склонных к взаимодействию с полярным элюентом, существенно ослабляет удерживание. Появление в молекулах сорбатов сложноэфирной группы в целом значительно увеличивает объем, поляризуемость и липофильность соответствующих производных, но практически не влияет на удерживание, в связи с чем высказано предположение о том, что присутствие карбонильного атома кислорода, способного взаимодействовать с полярными компонентами элюента, нивелирует влияние физико-химических факторов, определяющих сорбцию этих веществ за счет дисперсионных взаимодействий.
Таким образом, несмотря на симбатность в изменении физико-химических параметров исследованных соединений и их удерживания, строгая пропорциональность при этом отсутствует, поскольку, с одной стороны, удерживание сорбатов осуществляется в соответствии с изменением их физико-химических параметров, а с другой стороны, определяется склонностью молекул этих соединений к конкурентным взаимодействиям с компонентами подвижной фазы.
Представленные результаты работы могут быть полезны при разработке и оптимизации методик анализа аналогичных по структуре соединений, а также для развития теории сорбции полифункциональных соединений из многокомпонентных растворов и установлению взаимосвязи между характеристиками сорбции, другими физико-химическими параметрами и структурой молекул.
Скачивания
Литература
Anaya-Esparza L.M., de la Mora Z.V., Vázquez-Paulino O. et al., Bell Peppers (Capsicum annum L.) Losses and Wastes: Source for Food and Pharmaceutical Ap-plications. Molecules, 2021; 26: 5341. https://doi.org/10.3390/molecules26175341
Lemos V.C., Reimer J.J., Wormit A., Color for Life: Biosynthesis and Distribution of Phenolic Compounds in Pepper (Capsicum annuum). Agriculture, 2019; 9: 81. https://doi.org/10.3390/agriculture9040081
Lang Y.-Q., Yanagawa S., Sasanuma T. Orange Fruit Color in Capsicum due to Deletion of Capsanthin-capsorubin Synthe-sis Gene. Breeding Sci., 2004; 54: 33-39. https://doi.org/10.1270/jsbbs.54.33
Arimboor R., Natarajan R.B., Menon K.R., Red pepper (Capsicum annuum) ca-rotenoids as a source of natural food colors: analysis and stability – a review. J. Food Sci. Technol., 2015; 52: 1258-1271. https://doi.org/10.1007/s13197-014-1260-7
Hassan N.V., Yusof N.A., Yahaya A.E., Carotenoids of Capsicum Fruits: Pigment Profile and Health-Promoting Functional Attributes. Antioxidants, 2019; 8: 469. https://doi.org/10.3390/antiox8100469
Carpentier S., Knaus M., Suh M., As-sociations between Lutein, Zeaxanthin, and Age-Related Macular Degeneration: An Overview. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2009; 49: 313-326. https://doi.org/10.1080/10408390802066979
Deineka V.I., Sorokopudov V.N., De-ineka L.A. Flowers of marigold (Tagetes) species as a source of xanthophylls. Pharm. Chem. J., 2007; 41: 540-542. https://doi.org/10.1007/s11094-008-0007-z
Deineka V.I., Sorokopudov V.N., De-ineka L.A. et al., Studies of Physalis alkekengi L. fruits as a source of xantho-phylls. Pharm. Chem. J., 2008; 42: 87-88. https://doi.org/10.1007/s11094-008-0065-2
Guzman I., Hamby S., Romero J. Var-iability of carotenoid biosynthesis in or-ange colored Capsicum spp. Plant Sci., 2010; 179: 49-59. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2010.04.014
Wall M.M., Waddell C.A., Bosland P.W. Variation in β-Carotene and Total Carotenoid Content in Fruits of Capsicum. Hort. Sci., 2001; 36: 746-749. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.36.4.746
Sajilata M.G., Singhal R.S., Kama M.Y. The Carotenoid Pigment Zeaxan-thin—A Review. Compr. Rev. Food Sci. Food Safety, 2008; 7: 29-49. https://doi.org/10.1111/j.1541-4337.2007.00028.x
Zeb A., Murkovic M. Thin-layer chromatographic analysis of carotenoids in plant and animal samples J. Planar Chro-mat., 2000; 2: 94-103. https://doi.org/10.1556/JPC.23.2010.2.1
Bunea A., Socaciu C., Pintea A. Xanthophyll Esters in Fruits and Vegeta-bles. Not. Bot. Horti. Agrobo, 2014; 42: 310-324. https://doi.org/10.15835/nbha4229700
Wu L., Huang X., Shi K., Tan R. Bi-oavailability comparison of free and esteri-fied lutein for layer hens. Braz. J. Poultry Sci., 2009; 11: 95-98. https://doi.org/10.1590/S1516-635X2009000200004
Zenkevich I.G. Application of recur-rent relationships in chromatography, J. Chemometrics, 2009; 23: 179-187. https://doi.org/10.1002/cem.1214