Обнаружение способности к диссимиляционной тиосульфатредукции у представителей бесцветных серобактерий ро-да Thiothrix с использованием РНК, выделенной методом сорбции
Аннотация
Впервые для представителей нитчатых бесцветных серобактерий рода Thiothrix, таких как T. litoralis ASТ, T. unzii A1Т и T. nivea JP2Т, была обнаружена способность к анаэробному дыханию с использованием тиосульфата в качестве терминального акцептора электронов. Ранее для этих бактерий была показана способность к литотрофному росту в присутствии тиосульфата в качестве донора электронов для энергетического метаболизма.
Для установления механизма восстановления тиосульфата при анаэробном росте, участие тиосульфатредуктазы или диспропорционирование тиосульфата, был проведен анализ конечных продуктов его превращения. У всех исследованных представителей рода Thiothrix были выявлены продукты, образующиеся при превращении тиосульфата, сульфит и сульфид, характерные при функционировании тиосульфатредуктазы, тогда как продукты, характерные для процесса диспропорционирования тиосульфата (сульфат и сульфид), не были выявлены.
В ходе исследования были идентифицированы гены phsA, phsB и phsС, кодирующие тиосульфатредуктазу (хинон, КФ 1.8.5.5), показана экспрессия этих генов в анаэробных условиях. Установлено, что при анаэробном росте на тиосульфате по сравнению с аэробным культивированием экспрессия генов phsA, phsB, phsC у T. litoralis ASТ, T. unzii A1Т и T. nivea JP2Т в первом пассаже увеличивается в 6-15 раз, тогда как во втором пассаже у T. unzii A1Т наблюдается многократное увеличение экспрессии генов в среднем в 180 раз. Для экстракции суммарной РНК использовались сорбирующие колонки. Образцы гомогенизировались и лизировались в присутствии хаотропной соли, а затем наносились на спин-колонку, отмывались от загрязнений. Удаление примесей ДНК и получение чистой РНК проводили, подвергая образец обработке ДНКазой непосредственно на спин-колонке. Качество РНК оценивали электрофорезом не менее 2% агарозном геле с добавлением 2.2. М раствора формальдегида.
В сероводородных биотопах, где спорадически создаются анаэробные условия, представители рода Thiothrix, ведущие прикрепленный образ жизни, для выживания в резко меняющихся условиях вынуждены переходить с аэробного дыхания на анаэробное. Невысокий урожай клеток T. litoralis ASТ, T. unzii A1Т и T. nivea JP2T (15 мг/дм3) при анаэробном росте на тиосульфате указывает, что процесс анаэробного дыхания на тиосульфате носит характер поддерживающего метаболизма.
Полученные данные позволяют приблизиться к разгадке, каким образом литотрофные серобактерии рода Thiothrix, ведущие прикрепленный образ жизни, эффективно используют тиосульфат в своей метаболической стратегии, приспосабливаясь к изменяющимся условиям среды, и объясняют их доминирующее положение в проточных сероводородных биотопах.
Скачивания
Литература
Aketagawa J., Kobayashi K., Ishimoto M., Purification and properties of thiosulfate reductase from Desulfovibrio vulgaris, J. Bio-chem., 1985; 97 (4): 1025-1032. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.jbchem.a135144.
Kuznetsov S.I., Dubinina G.A., Meth-ods of investigation of aqueous microorgan-isms, Nauka., 1989; 285. (In Russ.)
Ravin N.V., Rudenko T.S., Smolyakov D.D., Beletsky A.V., Gureeva M.V., Samylina O.S., Grabovich M.Y., History of the study of the genus Thiothrix: from the first enrichment cultures to pangenomic analysis, Int. J. Mol. Sci., 2022; 23(17): 9531. https://doi.org/10.3390/ijms23179531
Grabovich, M.Y., Ravin, N.V., Boden, R. Thiothrix. In Bergey’s Manual of Systemat-ics of Archaea and Bacteria; John Wiley & Sons, Inc.: Hoboken, NJ, USA, 2023; 21. https://doi.org/10.1002/9781118960608.gbm01229.pub2
Armbruster E.H., Improved technique for isolation and identification of Sphaerotilus, Appl. Microbiol., 1969; 17(2): 320-321. https://doi.org/10.1128/am.17.2.320-321.1969
Lippert K.D., Pfennig N., Die Verwer-tung von molekularem wasserstoff durch chlo-robium thiosulfatophilum. wachstum und CO2-fixierung [Utilisation of molecular hydrogen by Chlorobium thiosulfatophilum. Growth and CO2-fixation], Arch. Mikrobiol., 1969; 65: 29-47. (In Russ.)
Winogradsky, S. Beiträge zur mor-phologie und physiologie der bacterien. In Heft I. Zur Morphologie UND Physiologie Der Schwefelbacterien; Arthur Felix: Leipzig, Ger-many, 1888: 1-120.
Larkin J.M., Strohl W.R., Beggiatoa, Thiothrix, and Thioploca, Microbiol. Annual. Review of Microbiology., 1983; 37: 341-367. https://doi.org/10.1146/annurev.mi.37.100183.002013
Rudenko T.S., Orlova M.V., Slepchen-ko A.V., Shatskiy N.D., Smoliakov D.D., Grabovich M.Y., Methylotrophy in Azospiril-lum thiophilum BV-S, Sorbtsionnye I Khroma-tograficheskie Protsessy, 2018; 18(3): 438-442. https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2018.18/549 (In Russ.)
Hammer M., Mark J. Water and Waste-Water Technology. New York: John Wiley & Sons, Incorporated. 1974. 502 p.
Myers J.E., Farhat D., Guzman A., Ar-ya V., Myers et al. Respond, Am. J. Public Health, 2019; 109(11): 21-22. https://doi.org/10.2105/AJPH.2019.305323
Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J., Protein measurement with the Folin phenol reagent, J. Biol. Chem., 1951; 193(1): 265-75
Brettin T., Davis J.J., Disz T., Edwards R.A., Gerdes S., Olsen G.J., Olson R., Over-beek R., Parrello B., Pusch G.D., Shukla M., Thomason J.A. 3rd, Stevens R., Vonstein V., Wattam A.R., Xia F., RASTtk: a modular and extensible implementation of the RAST algo-rithm for building custom annotation pipelines and annotating batches of genomes, Sci. Rep., 2015; 10: 8365. https://doi.org/10.1038/srep08365
Tamura K., Stecher G., Kumar S., MEGA11: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 11, Mol. Biol. Evol., 2021; 38(7): 3022-3027. https://doi.org/10.1093/molbev/msab120
Haschke R.H., Campbell L.L., Thiosul-fate reductase of Desulfovibrio vulgaris, Bacte-riol., 1971; 106(2): 603-607. https://doi.org/10.1128/jb.106.2.603-607.1971
Haja D.K., Wu C.H., Poole F.L. 2nd, Sugar J, Williams S.G., Jones A.K., Adams M.W.W., Characterization of thiosulfate reduc-tase from Pyrobaculum aerophilum heterolo-gously produced in Pyrococcus furiosus, Ex-tremophiles, 2020; 24: 53-62. https://doi.org/10.1007/s00792-019-01112-9
Chauncey T.R., Uhteg L.C., Westley J., Thiosulfate reductase, Methods Enzymol., 1987; 143: 350-354. https://doi.org/
1016/0076-6879(87)43062-0
Bang S.W., Clark D.S., Keasling J.D., Engineering hydrogen sulfide production and cadmium removal by expression of the thiosul-fate reductase gene (phsABC) from Salmonella enterica serovar typhimurium in Escherichia coli, Appl. Environ. Microbiol., 2000; 66(9): 39-44. https://doi.org/10.1128/AEM.66.9.3939-3944.2000
Kramer M., Cypionka H., Sulfate for-mation via ATP sulfurylase in thiosulfate- and sulfite-disproportionating bacteria, Arch. Mi-crobiol., 1989; 151: 232-237. https://doi.org/10.1007/BF00413135
Saitou N., Nei M., The neighbor-joining method: a new method for reconstruct-ing phylogenetic trees, Mol. Biol. Evol., 1987; 4(4): 406-425. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a040454
Felsenstein J., Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap, Evolution., 1985; 39: 783-791. https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.1985.tb00420.x
Zuckerkandl E., Pauling L., Molecules as documents of evolutionary history, J. Theor. Biol., 1965; 8(2): 357-366. https://doi.org/10.1016/0022-5193(65)90083-4