Применение хроматографических методов для очистки аконитатгидратазы из сердца крыс с патологией и исследование некоторых каталитических свойств фермента
Аннотация
В ходе настоящей работы была проведена оценка ряда каталитических и регуляторных свойств ферментного препарата цитоплазматической фракции аконитатгидратазы (АГ, КФ 4.2.1.3), очищенного с использованием гель-фильтрации и ионообменной хроматографии из сердца крыс (Rattus norvegicus линии Wistar) с диклофенак-индуцированным повреждением миокарда, получавших дипиколиновую кислоту (ДПК). Были сформированы три экспериментальные группы животных. Крысам контрольной группы с 15 дня эксперимента вводили внутрибрюшинно физиологический раствор на протяжении 7 дней. Вторая группа животных в первый день получала 100 мкл адъюванта Фрейнда, однократно, в левую подошвенную поверхность задней лапы путем подкожной инъекции. Затем с 15 дня животным внутрибрюшинно вводили диклофенак натрия в дозе 10 мг/кг в течение 7 дней. Третья группа животных параллельно с диклофенаком натрия получала внутрижелудочно дипиколиновую кислоту в дозе 10 мг/кг массы тела. Сердце и сыворотку крови забирали через 24 часа после последней инъекции. Маркерные ферменты цитолиза кардиомиоцитов в сыворотке крови анализировали с помощью коммерческих наборов. Уровень окислительной модификации белков определяли по реакции с 2,4-динитрофенилгидразином. Активность АГ исследовали спектрофотометрически при 235 нм. Разделение цитоплазматической и митохондриальной фракции осуществляли с помощью дифференциального центрифугирования. С применением методов фракционирования сульфатом аммония, гель-фильтрации через сефадексы G-25 и G-150, и ионообменой хроматографии на КМ-целлюлозе проводили очистку фермента из сердца крыс. В ходе работы была получена АГ цитоплазматической фракции из сердца крыс с диклофенак-индуцированным поражением миокарда с 120-кратной степенью очистки, а из сердца крыс, получавших на фоне патологии ДПК – со степенью очистки 122.1 раза. С применением метода двойных обратных координат Лайнуивера-Берка показано, что введение крысам ДПК сопровождалось восстановлением сродства фермента к цитрату и изоцитрату, по сравнению с показателями при патологии. Помимо этого, наблюдалось изменение в направлении контроля таких параметров ферментативной реакции, как температурный и pH-оптимум, а также энергия активации. Для АГ из сердца крыс с патологией, получавших ДПК, наблюдалось более выраженное увеличение активности фермента при внесении в реакционную среду восстановленного глутатиона, по сравнению с показателями у животных, получавших только диклофенак. Выявленные сдвиги свойств АГ могли быть связаны с изменениями структурных и регуляторных особенностей молекулы фермента на фоне снижения под действием ДПК интенсивности свободнорадикального окисления, развивающегося в результате воздействия диклофенака.
Скачивания
Литература
McGettigan P., Henry D, PLoS Med, 2013; 10: 1001388. https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1001388
Turgut D., Mustafa M., Huseyin F.G., The American Journal of Emergency Medicine, 2021; 560: 560-566. https://doi.org/10.1016/j.ajem.2020.11.022
Hanna V.S., Hafez E.A.A. J Adv Res, 2018; 11: 23-32. https://doi.org/10.1016/j.jare.2018.03.005.
Mitchell J.A., Kirkby N.S. British Journal of Pharmacology, 2019; 176: 1038-1050. https://doi.org/10.1111/bph.14167
Hausenloy D.J., Yellon D.M. J Clin Invest, 2013; 123: 92-100. https://doi.org/10.1172/JCI62874
Tan M., Yin Y., Ma X., Zhang J., Pan W., Tan M., Zhao Y., Yang T., Jiang T., Li H. Cell Death Dis, 2023; 14: 131. https://doi.org/10.1038/s41419-023-05645-y
Won S.J., Kim J.E., Cittolin-Santos G.F., Swanson R.A. Journal of Neuroscience, 2015; 35: 7143-7152. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.4826-14.2015
Vázquez-Meza H., Vilchis-Landeros M.M., Vázquez-Carrada M., Uribe-Ramírez D., Matuz-Mares D. Antioxidants, 2023; 12: 834. https://doi.org/10.3390/antiox12040834.
Matasova L.V., Popova T.N. Biochemistry (Moscow), 2008; 73: 957-964. https://doi.org/10.1134/S0006297908090010
Kayani K.F., Shatery O.B.A., Mohammed S.J., Ahmed H.R., Hamarawf R.F., Mustafa M.S. Nanoscale Adv, 2025; 7: 13-41. https://doi.org/10.1039/D4NA00652F
Ohsugi T., Ikeda S., Sumi H. Food Science and Technology Research, 2005; 11: 308-310. https://doi.org/10.3136/fstr.11.308
None N.N., Ahmed M.M., Journal of Con-temporary Clinical Practice, 2025; 11: 286-291. https://doi.org/10.61336/jccp/25-05-37
Ma N., Yang Y., Liu X., Li S., Qin Z., Li J. Journal of Proteomics, 2020; 215: 103631. https://doi.org/10.1016/j.jprot.2019.103631
Reznick A.Z., Packer L. Methods Enzymol, 1994; 233: 357-363. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(94)33041-7
Mawatari K., Atsumi M., Nakamura F., Yasuda M., Fukuuchi T., Yamaoka N., Kaneko K., Nakagomi K., Oku N., International Journal of Tryptophan Research, 2019; 12: 1178646919852120. https://doi.org/10.1177/1178646919852120.
Murakami K., Tanemura Y., Yoshino M. The Journal of Nutritional Biochemistry, 2003; 14: 99-103. https://doi.org/10.1016/S0955-2863(02)00252-8
Murakami K., Yoshino M. Biomedical Re-search, 1999; 20: 321-326. https://doi.org/10.2220/biomedres.20.321
Murakami K., Ueda T., Morikawa R., Ito M., Haneda M., Yoshino M. Biomedical Re-search, 1998; 19: 205-208. https://doi.org/10.2220/biomedres.19.205
Medvedeva L.V., Popova T.N., Artyukhov V.G., Matasova L.V., Akatova R.V. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 2002; 134: 130-134. https://doi.org/10.1023/A:1021171811902





