Хроматографическое выделение изоферментов сукцинатдегидрогеназы из листьев кукурузы при солевом стрессе
Аннотация
Целью данного исследования являлось получение в гомогенном состоянии препаратов сукцинатдегидрогеназы (СДГ) из листьев кукурузы и изучение их характеристик, обеспечивающих адаптивную реакцию на солевой стресс. СДГ обладает высоким генетическим полиморфизмом, что может указывать на важность участия ее изоферментов в регуляции метаболизма растений и позволяет клетке формировать набор молекулярных форм, отличающихся по своим кинетическим и регуляторным характеристикам. При использовании многостадийной очистки молекулярных форм данной ферментной системы были получены ее препараты в гомогенном состоянии. Ионообменная хроматография на ДЭАЭ-Sephacel являлась определяющей стадией, позволившей разделить изоферменты исследуемого энзима из листьев кукурузы при воздействии солевого стресса. Показано, что все изоэнзимы десорбируются с ДЭАЭ-Sephacel при разных концентрациях хлорида калия, что может указывать на различие в структурной организации полипептидных компонентов изоформ сукцинатдегидрогеназы. Удельная активность полученных препаратов составляла 0.935 Е/мг белка и 1.495 Е/мг белка, соответственно для изоферментов СДГ1 и СДГ2, при этом выход составлял 42.31 и 35.05%. Электрофоретические исследования, полученных с помощью ДЭАЭ-целлюлозы изоферментов СДГ, показали, что при универсальном проявлении на белок, было показано наличие одной полосы в каждом из исследуемых образцов. Следовательно, полученные препараты сукцинатдегидрогеназы являются электрофоретически гомогенными. Установлено, что изоферменты сукцинатдегидрогеназы из листьев кукурузы, обладали разной степенью сорбции на ионообменнике ДЭАЭ-Sephacel о чем свидетельствуют результаты профиля элюирования с колонки. Десорбция изоферментов СДГ1 и СДГ2 с колонки ДЭАЭ-Sephacel происходила при концентрации KCl 91.65 мМ и 174.95 мМ KCl, соответственно, что свидетельствует о различии величины поверхностного заряда изоферментов сукцинатдегидрогеназы из листьев кукурузы. Изменение значений рН матрикса митохондрий сказывается на конформационных состояниях белковых компонентов изоферментов СДГ, в том числе и на поверхностном заряде молекулы и ионизации аминокислотных остатков активного центра энзима, что находит отражение в изменении сродства к субстрату.
Скачивания
Литература
Eprintsev A.T., Popov V.N., Fedorin D.N. Sukcinatdegidrogenaza vysshih rastenij. Voronezh: Center. Chern. Book publishing house. 2010. 184 p. (In Russ.)
Millar A.H., Eubel H., Jansch L., Kruft V., Heazlewood J.L., Braun H-P. Structure of Mitochondrial Respiratory Membrane Protein Complex II. Plant Molecular Biology. 2004; 56; 77-90. https://doi.org/10.1007/s11103-004-2316-2
Sun F., Huo X., Zhai Y., Wang A., Xu J., Su D., Bartlam M., Rao Z. Structure of Mi-tochondrial Respiratory Membrane Protein Complex II. Cell. 2005; 121(7); 1043-1057. https://doi.org/10.1016/j.cell.2005.05.025
Cammack R., Maguire J.J., Ackrell B.A.C. Mechanisms of Electron Transfer in Succinate Dehydrogenase and Fumarate Reductase: Possible Functions for Iron-Sulphur Centre 2 and Cytochrome b. Cytochrome Sys-tems. 1987; 485-491. https://doi.org/10.1007/978-1-4613-1941-2_68
Balnokin Yu.V., Kotov A.A., My-asoedov N.A., Khailova G.F., Kurkova E.B., Lunkov R.V., Kotova L.M. Uchastie dal'nego transporta Na+ v podderzhanii gradienta vodnogo potenciala v sisteme sreda – koren' – list u galofita Suaeda altissima. Fiziologiya ras-teniy. 2005; 52: 549‒557. https://doi.org/10.1007/s11183-005-0072-z (In Russ.)
Jacoby R.P., Che-Othman M.H., Millar A.H., Taylor N.L. Analysis of the sodium chloride-dependent respiratory kinetics of wheat mitochondria reveals differential effects on phosphorylating and non-phosphorylating elec-tron transport pathways. Plant, Cell & Envi-ronment. 2016; 39: 823-833. https://doi.org/10.1111/pce.12653
Prasada R.K., Lall A.M., Abraham G., Ram G., Ramteke P.W. Prasada R.K., Lall A.M., Abraham G., Ram G., Ramteke P.W. International Journal of Bioinformatics and Biological Science. 2013; 1(3): 293-302.zInternational Journal of Bioinformatics and Biological Science. 2013; 1(3): 293-302.
Popov V.N., Eprintsev A.T., Fedorin D.N. Svetovaya regulyaciya ekspressii suk-cinatdegidrogenazy v list'yah arabidopsis thali-ana. Fiziologiya rasteniy. 2007; 54: 409-415. (In Russ.)
Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Fo-lin phenol reagent. Journal Biological Chemis-try. 1951; 193: 265-275. https://doi.org/10.1016/s0021-9258%2819%2952451-6
Schilling B., Murray J., Yoo C.B., Row R.H., Cusack M.P., Capaldi R.A., Gibson B.W. Proteomic analysis of succinate dehydro-genase and ubiquinol-cytochrome c reductase (Complex II and III) isolated by immunoprecip-itation from bovine and mouse heart mitochon-dria. Biochimica et Biophysica Acta (BBA). 2006; 1762: 213-222.
Fedorin D.N., Karabutova L.A., Pokusina T.A., Eprintsev A.T. Vydelenie izoform sukcinatdegidrogenazy iz zelenyh list'ev kukuruzy metodom ionoobmennoj hromatografii. Sorbtsionnye i khromatograficheskie protsessy. 2016; 16(4): 544-549. (In Russ.)
Fedorin D.N., Eprintsev A.T. Vydelenie izofermentov sukcinatdegidrogenazy iz list'ev goroha metodom ionoobmennoj hromatografii. Sorbtsionnye i khromatograficheskie protsessy. 2018; 18(4): 563-567. https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2018.18/564 (In Russ.)
Kader M.A., Lindberg S. Cytosolic calcium and pH signaling in plants under salinity stress. Plant Signal Behavior. 2010; 5(3): 233-238. https://doi.org/10.4161/psb.5.3.10740
Selemenev V.F., Rudakova L.V., Rudakov O.B., Belanova N.A., Nazarova A.A., Fosfolipidy na fone prirodnyh matric Voronezh. Nauchnaya kniga. 2020. 318 p. (In Russ.)
Selemenev V.F., Rudakov O.B., Slavinskaya G.V., Drozdova N.V. Pigmenty pishchevyh proizvodstv (melanoidiny). M. Delhi print. 2008. 246 p. (In Russ.)