Разработка эффективного метода очистки ДНК при бисульфитной конверсии с использованием оксида кремния в качестве сорбента
Аннотация
Метилирование ДНК – один из самых изученных механизмов эпигенетической регуляции генома, который контролирует экспрессию генов растений и животных. Разработка эффективных методов анализа метильного статуса генов имеет огромное значение, так как обработка ДНК бисульфитом натрия – многоэтапный и трудоемкий процесс, в котором недопустимы большие потери целевого продукта. Именно поэтому чистота модифицированной ДНК играет решающую роль в последующем процессе амплификации. Наличие в исследуемых образцах высоких концентраций различных солей и примесей способно ингибировать полимеразную активность ДНК-полимеразы. В типичных протоколах, описывающих методику конверсии ДНК бисульфитом натрия, для очистки модифицированной ДНК используют коммерческие наборы, однако их применение нередко приводит к большим потерям целевого продукта, что существенно снижает эффективность процесса очистки. Кроме того, в условиях большого объема анализируемых образцов применение коммерческих наборов существенно повышает стоимость работ. В рамках исследования разработан эффективный, простой и недорогой способ очистки модифицированной ДНК от солей путём сорбции на диоксид кремния (SiO2). Применение в качестве сорбента мелкодисперсного диоксида кремния обусловлено его способностью селективно связываться c молекулами отрицательно заряженной ДНК. Анализ конвертированной и очищенной ДНК методом электрофореза в 2% агарозном геле позволил установить, что потери целевого продукта в ходе многостадийной обработки бисульфитом натрия составили порядка 33%. Проведение метил-специфичной ПЦР с использованием праймеров к отдельным CpG-динуклеотидам в составе промотора гена GDH2 глутаматдегидрогеназы кукурузы (Zea mays L.) отмечено, что полученные ампликоны соответствовали теоретическому размеру – 175 п.н., 203 п.н. и 275 п.н. к первому, второму и третьему анализируемому CpG-динуклеотиду, соответственно. В связи с этим, можно утверждать, что конвертированная и сорбированная на диоксид кремния матрица пригодна для анализа метильного статуса ДНК.
Скачивания
Литература
Ashapkin V.V., Kutueva L.I., Aleksandrushkina N.I., Vanyushin B.F. Epigenetic mechanisms of plant adaptation to biotic and abiotic stresses. International Journal of Molecular Sciences. 2020; 21(20): 7457.
Vanyushin B.F., Ashapkin V.V. DNA methylation in higher plants: past, present and future. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Gene Regulatory Mechanisms. 2011; 1809(8): 360-368.
Kirnos M.D., Aleksandrushkina N.I., Vanyushin B.F. 5-metiltsitozin v pirimidinovykh posledovatel'nostyakh DNK rastenii i zhivotnykh: spetsifichnost' metilirovaniya. Biochemistry. 1981; 46(12): 1458-1474.
Smirnikhina S.A., Lavrov A.V. Metody otsenki metilirovaniya ostatkov tsitozina v DNK. Molekulyarnaya biologiya. 2009; 43(3): 387-391.
Ryabushkina N.A., Omasheva M.E., Galiakparov N.N. Spetsifika vydeleniya DNK iz rastitel'nykh ob"ektov. Biotekhnologiya. Teoriya i praktika. 2012; 2: 9-26. (In Russ.)
Eprintsev A.T., Popov V.N., Fedorin D.N. Identifikatsiya i issledovanie ekspressii genov. Voronezh: Izd-vo Voronezh. un-ta, 2008. 63 p. (In Russ.)
Selemenev V.F., Rudakova L.V., Rudakov O.B., Belanova N.A., Nazarova A.A. Fosfolipidy na fone prirodnyh matricz. Voronezh: Science Book. 2020. 318 p. (In Russ.)
Selemenev V.F., Rudakov O.B., Slavinskaya G.V., Drozdova N.V. Pigmenty pishhevykh proizvodstv (Melanoidiny). M: Delhi Print. 2008. 246 p. (In Russ.)
Hsieh C.L. Evidence that protein binding specifies sites of DNA demethylation. Molecular and cellular biology. 1999; 19(1): 46-56.
Katevatis C., Fan A., Klapperich C.M. Low concentration DNA extraction and recovery using a silica solid phase. PLoS One. 2017; 12(5): 1-14. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0176848
Selemenev V.F., Oros G.Yu., Rudenko I.V., Stukalov O.I., Tsyurupa M.P., Davankov V.A. Sposob polucheniya nukleinovykh kislot i aminokislot iz avtolizatov pekarskikh drozhzhei. 1999.
Rimola A., Costa D., Sodupe M., Lambert J.F., Ugliengo P. Silica surface features and their role in the adsorption of biomolecules: computational modeling and experiments. Chemical Reviews. 2013; 113(6): 4216-4313. https://doi.org/10.1021/cr3003054
Poeckh T., Lopez S., Fuller A.O., Solomon M.J., Larson R.G. Adsorption and elution characteristics of nucleic acids on silica surfaces and their use in designing a miniaturized purification unit. Analytical Biochemistry. 2008; 373(2): 253-262. https://doi.org/10.1016/j.ab.2007.10.026
Kramer M.F., Coen D.M. Enzymatic Amplification of DNA by PCR: Standard Procedures and Optimization. Current Protocols in Molecular Biology. 2011; CHAPTER: Unit15.10.