Идентификация электрофоретическим способом продуктов рестрикционного анализа по сайту GATC геномной ДНК пшеницы при солевом стрессе

  • Дмитрий Николаевич Федорин Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия,
  • Виктория Олеговна Чуйкова Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия
  • Александр Трофимович Епринцев Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия
Ключевые слова: Triticum aestivum, рестрикция, аденин, метилирование ДНК, солевой стресс

Аннотация

Современные методы исследования нуклеиновых кислот показали наличие в составе ДНК модифицированных азотистых оснований, главным образом, в виде их метилирования. Несмотря на то, что за последние несколько десятилетий было проделано много работы по выяснению роли 5-метилцитозина, только в последнее время было признано, что N(6)-метиладенин (6mA) - N6-метиладенин присутствует в количественных и биологически активных уровнях в ДНК эукариотических клеток. Установлено, что содержание 6mА может варьировать более чем на порядок в пределах изогенной популяции организмов и уровни 6mА у этих организмов могут быть особенно чувствительны к незначительным изменениям в окружающей среде, например, к стрессовым факторам. Метилспецифичная рестрикция эндонуклеазой Mal 1 позволила выявить изменение аденилатного метильного статуса ДНК клеток листьев пшеницы в условиях солевого стресса. Это рестрицирующий фермент, распознающий метилированный аденин в составе последовательности нуклеотидов GATC и осуществляющий симметричную рестрикцию по данному сайту. Применение гуанидин-изотиоцианатной экстракции позволило выделить общую ДНК из клеток листьев пшеницы практически без следов деградации, что является необходимым условием для дальнейших аналитических исследований. Использование электрофоретического метода, обеспечивающего разделение фрагментов рестрикции на основе их заряда и размера, позволило оценить метильное состояние исследуемой последовательности ДНК листьев пшеницы в разных экспериментальных условиях. Анализ результатов рестрикционного анализа образцов ДНК пшеницы в разные часы засоления указывает, что в исследуемых образцах значительно меняется характер распределения продуктов рестрикции на основе их размера, что свидетельствует об изменении метильного статуса аденина в составе сайта GATC. Результаты денситометрии свидетельствуют об увеличении продуктов рестрикции по анализируемым сайтам. Относительно контрольного варианта, где обнаружены, в основном, высокомолекулярные рестрикционные фрагменты, на 24 час инкубации растений в растворе хлорида натрия основная доля продуктов рестрикции эндонуклеазой Mal 1 приходилась на низкомолекулярные. Увеличение продуктов рестрикции геномной ДНК пшеницы на 24 час эксперимента свидетельствует о большем количестве метилированного аденина в составе сайта GATC в данный период эксперимента. Изменение характера распределения метилирования аденина может являться регуляторным механизмом контроля адаптивной реакции клеточного метаболизма листьев пшеницы на уровне экспрессионной активности соответствующих генов.

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Дмитрий Николаевич Федорин, Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия,

доцент кафедры биохимии и физиологии клетки, доцент, к.б.н., Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия

Виктория Олеговна Чуйкова, Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия

бакалавр кафедры биохимии и физиологии клетки, Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия

Александр Трофимович Епринцев, Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия

заведующий кафедрой биохимии и физиологии клетки, профессор, д.б.н., Воронежский государственный университет, Воронеж, Россия

Литература

Hasegawa P.M., Bressan R.A., Zhu J.-K., Bohnert H.J. Plant cellular and mo-lecular responses to high salinity. Annual Review of Plant Physiology and Plant Mo-lecular Biology. 2000; 51: 463-499. https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.51.1.463

Bajji M., Kinet J.-M., Lutts S. Os-motic and ionic effects of NaCl on germi-nation, early seedling growth, and ion con-tent of Atriplex halimus (Chenopodiaceae). Canadian Journal of Botany. 2002; 80: 297-304. https://doi.org/https://doi.org/10.1139/b02-008

Igamberdiev A.U., Eprintsev A.T. Organic acids: the pools of fixed carbon involved in redox regulation and energy balance in higher plants. Frontiers in Plant Science. 2016; 7: 1042. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.01042

Eprintsev A.T., Fedorin D.N., Anokhina G.B., Igamberdiev A.U. Effects of light, anoxia and salinity on the expres-sion of dihydroxyacid dehydratase in maize. Journal of Plant Physiology. 2021; 265: 153507. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2021.153507

Eprintsev A.T., Fedorin D.N., Cher-kasskikh M.V., Igamberdiev A.U. Effect of Salt Stress on the Expression and Promoter Methylation of the Genes Encoding the Mi-tochondrial and Cytosolic Forms of Aco-nitase and Fumarase in Maize. Internation-al Journal of Molecular Sciences. 2021; 22: 6012. https://doi.org/10.3390/ijms22116012

Rogers J.C., Rogers S.W. Compari-son of the effects of N6-methyldeoxyadenosine and N5-methyldeoxycytosine on transcription from nuclear gene promoters in barley. Plant Journal. 1995; 7: 221-233. https://doi.org/10.1046/j.1365-313x.1995.7020221.x

O’Brown Z.K. Greer E.L. N6-methyladenine: a conserved and dynamic DNA mark. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2016; 945: 213-246. https://doi.org/10.1007/978-3-319-43624-1_10

Fu Y., Luo G-Z., Chen K., Deng X., Yu M., Han D., Hao Z., Liu J., Lu X., Dore L.C., Weng X., Ji Q., Mets L., He C. N6-methyldeoxyadenosine marks active tran-scription start sites in Chlamydomonas. Cell. 2015; 161: 879-892. https://doi.org/10.1016/j.cell.2015.04.010

Jia G., Fu Y., Zhao X., Dai Q., Zheng G., Yang Y., Yi C., Lindahl T., Pan T., Yang Y-G., He C. N6-Methyladenosine in nuclear RNA is a major substrate of the obesity-associated FTO. Nature Chemical Biology. 2011; 7: 885-887. https://doi.org/10.1038/nchembio.687

Jones P.A. Functions of DNA meth-ylation: islands, start sites, gene bodies and beyond. Nature Reviews Genetics. 2012; 13: 484‒492. https://doi.org/10.1038/nrg3230

Eprintsev A.T., Fedorin D.N., Igamberdiev A.U. Light Dependent Chang-es in Adenylate Methylation of the Pro-moter of the Mitochondrial Citrate Syn-thase Gene in Maize (Zea mays L.) Leaves. International journal of molecular scienc-es. 2022; 23: 13495. https://doi.org/10.3390/ijms232113495

Gupta N. DNA Extraction and Pol-ymerase Chain Reaction. Journal of Cytol-ogy. 2019; 36: 116-117. https://doi.org/10.4103/JOC.JOC_110_18

Siwek W., Czapinska H., Bochtler M., Bujnicki J.M., Skowronek K. Crystal structure and mechanism of action of the N6-methyladenine-dependent type IIM re-striction endonuclease R. DpnI. Nucleic Acids Res. 2012; 40: 7563-7572. https://doi.org/10.1093/nar/gks428

Lakin G.F. Biometrics. M.: Higher school, 1990. 351p. (In Russ.)

Lacks S., Greenberg B. A deoxyri-bonuclease of Diplococcus pneumoniae specific for methylated DNA. The Journal of Biological Chemistry. 1975; 250: 4060-4066.

Selemenev V.F., Rudakov O.B., Slavinskaya G.V., Drozdova N.V. Pig-menty pishchevyh proizvodstv (mela-noidiny). M: Delhi print. 2008. 246 p. (In Russ.)

Опубликован
2023-05-24
Как цитировать
Федорин, Д. Н., Чуйкова, В. О., & Епринцев, А. Т. (2023). Идентификация электрофоретическим способом продуктов рестрикционного анализа по сайту GATC геномной ДНК пшеницы при солевом стрессе. Сорбционные и хроматографические процессы, 23(2), 299-306. https://doi.org/10.17308/sorpchrom.2023.23/11153

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)